硝酸還原酶（NR）活性檢測試劑盒（Griess顯色法）說明書

可見分光光度法

貨號：BC4960

規(guī)格：50T/24S

產(chǎn)品組成：使用前請認(rèn)真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致，有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

溶液的配制：

1、 誘導(dǎo)液：將誘導(dǎo)劑儲備液用蒸餾水10倍稀釋后使用，即取10 mL誘導(dǎo)劑儲備液加90 mL蒸餾水，充分混勻?，F(xiàn)配現(xiàn)用。

2、 試劑二：加入1mL蒸餾水，-20℃分裝保存，可以-20℃保存2周。臨用前用蒸餾水將試劑二稀釋50倍，備用，即取10 μL試劑二加入490 μL蒸餾水混勻。

3、 標(biāo)準(zhǔn)品：10 μmol/mL亞硝*標(biāo)準(zhǔn)溶液。臨用前將用蒸餾水標(biāo)準(zhǔn)溶液稀釋100倍得到0.1 μmol/mL的亞硝*標(biāo)準(zhǔn)液，備用。

產(chǎn)品說明：

NR（EC 1.7.1.3）廣泛存在于植物中，是植物硝態(tài)氮轉(zhuǎn)化為氨態(tài)氮的關(guān)鍵酶，也是誘導(dǎo)酶，對作物的產(chǎn)量和品質(zhì)有影響。NR催化硝酸鹽還原為亞*鹽，NO₃^ˉ +NADH+H^＋→NO₂^ˉ+NAD^＋+H₂O。在酸性條件下，產(chǎn)生的NO₂^ˉ能夠參與重氮化反應(yīng)生成紫紅色化合物，這種紫紅色化合物在540 nm處有吸收峰，540 nm下吸光值的變化即可表示酶活。

注意：實驗之前建議選擇2-3個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

需自備的儀器和用品：

可見分光光度計、水浴鍋/培養(yǎng)箱、臺式離心機、1 mL玻璃比色皿、研缽/勻漿器、冰和蒸餾水。

操作步驟：

一、樣本處理（可適當(dāng)調(diào)整待測樣本量，具體比例可以參考文獻）

1、組織前處理：

（1） 取適量誘導(dǎo)液于燒杯中，將新鮮標(biāo)本洗凈，濾紙吸干，放入誘導(dǎo)液中（淹沒即可），避光浸泡2 h，取出樣本，濾紙吸干后，-20℃冷凍30 min，取出樣本，濾紙吸干。（根據(jù)需要進行誘導(dǎo)處理，一般不需要誘導(dǎo)處理，預(yù)實驗結(jié)果沒有活性則需要進行誘導(dǎo)處理）

（2） 按照組織質(zhì)量(g)：提取液體積(mL)為1:5~10的比例(稱取約0.1 g樣本，加入1 mL提取液)，冰浴研磨，8000g，4℃離心10 min，取上清置冰上待測。

2、細胞或細菌的前處理：

先收集細胞或細菌樣本到離心管內(nèi)，棄上清，按照每500萬細胞或細菌加入1mL提取液，超聲波破碎細菌或細胞（功率200W，超聲3s，間隔10s，重復(fù)30次）。8000g，4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

二、測定步驟

1、 可見分光光度計預(yù)熱30 min以上，調(diào)節(jié)波長至540 nm，蒸餾水調(diào)零。

2、 樣本測定：

三、NR活性計算

（1）按樣本蛋白濃度計算：

酶活定義：每小時每mg組織蛋白催化產(chǎn)生1 μmol NO₂^-的量為1個NR活力單位。

NR活力（U/mg prot）= C標(biāo)準(zhǔn)×（A測定-A對照）÷（A標(biāo)準(zhǔn)-A空白）×V樣本÷（V樣本×Cpr）÷T×F

= 0.2×（A測定-A對照）÷（A標(biāo)準(zhǔn)-A空白）÷Cpr×F

（2）按樣本質(zhì)量計算：

酶活定義：每小時每g組織催化產(chǎn)生1 μmol NO₂^-的量為1個NR活力單位。

NR活力（U/g 質(zhì)量）=C標(biāo)準(zhǔn)×（A測定-A對照）÷（A標(biāo)準(zhǔn)-A空白）×V樣本÷（W×V樣本÷V提取）÷T×F

= 0.2×（A測定-A對照）÷（A標(biāo)準(zhǔn)-A空白）÷W×F

（3）按細胞數(shù)量計算：

酶活定義：每小時每1萬個細胞或細菌催化產(chǎn)生1 μmol NO₂^-的量為1個NR活力單位。

NR活力（U/10⁴ cell）

=C標(biāo)準(zhǔn)×（A測定-A對照）÷（A標(biāo)準(zhǔn)-A空白）×V樣本÷（細胞或細菌數(shù)量×V樣本÷V提?。?/span>÷T×F

=0.2×（A測定-A對照）÷（A標(biāo)準(zhǔn)-A空白）÷細胞或細菌數(shù)量×F

C標(biāo)準(zhǔn)：亞硝 *標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度，0.1 μmol/mL；V提?。杭尤胩崛∫后w積，1 mL；W：樣本質(zhì)量，g；T：反應(yīng)時間，0.5 h；Cpr：樣本蛋白濃度，mg/mL；V樣本：加入的樣本體積，0.1 mL；細胞或細菌數(shù)量：以萬計；F：樣本稀釋倍數(shù)。

注意事項：

1. 吸光度大于0.8時，建議用提取液稀釋樣本，注意計算公式中參與計算的稀釋倍數(shù)要相應(yīng)改變。

2. 嚴(yán)格按照樣本測定表格列出順序加入試劑進行實驗。

實驗實例：

1. 取0.1 g綠蘿葉片加入1 mL提取液進行勻漿研磨，離心取上清按照測定步驟操作，測得A測定=0.072、A對照=0.051、A標(biāo)準(zhǔn)=0.363、A空白=0.005，按樣本質(zhì)量計算酶活得：

NR活力（U/g 質(zhì)量）= 0.2×（A測定-A對照）÷（A標(biāo)準(zhǔn)-A空白）÷W= 0.117 U/g 質(zhì)量。

2. 取0.1 g洋桔梗葉片加入1 mL提取液進行勻漿研磨，離心取上清按照測定步驟操作，測得A測定=0.063、A對照=0.032、A標(biāo)準(zhǔn)=0.363、A空白=0.005，按樣本質(zhì)量計算酶活得：

NR活力（U/g 質(zhì)量）= 0.2×（A測定-A對照）÷（A標(biāo)準(zhǔn)-A空白）÷W= 0.173 U/g 質(zhì)量。

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