超氧化物歧化酶（SOD）活性檢測試劑盒（WST-1法）說明書

可見分光光度法

注意：本產(chǎn)品試劑有所變動，請注意并嚴格按照該說明書操作。

貨號：BC5160

規(guī)格：50T/24S

產(chǎn)品組成：使用前請認真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致，有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

溶液的配制：

1、 試劑二：使用前先使用掌上離心機離心至管底再吹打混勻；

2、 試劑二工作液：根據(jù)樣本數(shù)量按試劑二：蒸餾水=5μL：395μL（共400μL，約4S）的比例配制試劑二工作液，現(xiàn)用現(xiàn)配；

3、 試劑四工作液：根據(jù)樣本量按試劑四：蒸餾水=20μL：180μL（共200μL，約4T）的比例配制試劑四工作液，現(xiàn)用現(xiàn)配。

產(chǎn)品說明：

SOD（EC 1.15.1.1）廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞中，催化超氧化物陰離子發(fā)生歧化作用，生成H₂O₂和O₂。SOD不僅是超氧化物陰離子清除酶，也是H₂O₂主要生成酶，在生物抗氧化系統(tǒng)中具有重要作用。

通過黃*呤及黃*呤氧化酶反應系統(tǒng)產(chǎn)生超氧陰離子(O₂^-)，O₂^-可與WST-1反應生成水溶性黃色甲臜，后者在450nm處有吸收峰；SOD可清除O₂^-，從而抑制了甲臜的形成；反應液黃色越深，說明SOD活性愈低，反之活性越高。

注意：實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

需自備的儀器和用品：

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、電子天平、可調(diào)式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。

操作步驟：

一、樣本處理（可適當調(diào)整待測樣本量，具體比例可以參考文獻）

1. 細菌或培養(yǎng)細胞樣本：收集細菌或細胞到離心管內(nèi)，離心后棄上清，按照細菌或細胞數(shù)量（10⁴個）：提取液體積（mL）=500-1000:1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率200W，超聲3s，間隔10s，重復30次），8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

2. 組織樣本：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積（mL）為1:5-10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

3. 血清（漿）樣本：直接檢測。若有渾濁可離心后取上清進行測定。

二、測定步驟

1. 分光光度計預熱30min以上，調(diào)節(jié)波長至450nm，蒸餾水調(diào)零。

2. 測定前將試劑一、試劑三和試劑四工作液37℃水浴5min以上。

3. 樣本測定（在EP管中按順序加入下列試劑）

充分混勻，37℃水浴30min后，置于1mL玻璃比色皿測定450nm下的吸光度，分別記為A測定、A對照、A1空白、A2空白，計算ΔA測定=A測定-A對照，ΔA空白=A1空白-A2空白。（空白管1和空白管2各只需做1~2管，每個樣本有一個對照管）

三、 SOD活性計算

1、抑制百分率的計算：

抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白× 100%

盡量使樣本的抑制百分率在30-70%范圍內(nèi)，越靠近50%越準確。如果計算出來的抑制百分率小于30%或大于70%，則通常需要調(diào)整加樣量后重新測定。如果測定出來的抑制百分率偏高，則需適當稀釋樣本；如果測定出來的抑制百分率偏低，則需重新準備濃度比較高的待測樣本或者提高加樣表中的樣本量，但需相應減少測定管和對照管中蒸餾水的體積。

2、SOD酶活性單位：在上述黃*呤氧化酶偶聯(lián)反應體系中抑制百分率為50%時，反應體系中的SOD酶活力定義為一個酶活力單位。

3、SOD酶活性計算：

（1）血清（漿）SOD活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總]÷V樣×F

=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×F

（2）組織、細菌或培養(yǎng)細胞SOD活力計算：

A. 按樣本蛋白濃度計算

SOD活性 (U/mg prot)=[抑制百分率÷（1-抑制百分率）×V反總]÷（V樣×Cpr）×F

=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷Cpr×F

B. 按樣本質(zhì)量計算

SOD活性 (U/g 質(zhì)量)=[抑制百分率÷(1 -抑制百分率)×V反總]÷(W×V樣÷V樣總)×F

=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F

C. 按細菌或細胞數(shù)量計算

SOD活力 (U/10⁴ cell)= [抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總]÷(N×V樣÷V樣總)×F

=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷N×F

V反總：反應體系總體積，1mL；V樣：加入反應體系中樣本的體積，0.09mL；V樣總：加入提取液體積，1mL；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/mL；W：樣本質(zhì)量，g；N：細胞或細菌總數(shù)，以10⁴計；F：樣本稀釋倍數(shù)。

注意事項：

1、 樣本和試劑二工作液使用時在冰上放置。

2、 樣本較多時，可按表格配制測定管工作液和對照管工作液（包含試劑一、（試劑二工作液）、試劑三、蒸餾水），試劑四工作液必須最后加入。

實驗實例：

1、 取0.1016g大鼠肝臟加入1mL提取液進行勻漿研磨，取上清稀釋50倍，按照測定步驟操作，用1mL玻璃比色皿測得計算ΔA測定= A測定-A對照=0.502-0.011=0.491，ΔA空白=A1空白-A2空白=0.983-0.005=0.978，抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=49.796%，按樣本質(zhì)量計算酶活得：

SOD活性（U/g 質(zhì)量）=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =5423.086 U/g 質(zhì)量。

2、 取0.1024g綠蘿葉片加入1mL提取液進行勻漿研磨，取上清稀釋3倍，按照測定步驟操作，用1mL玻璃比色皿測得計算ΔA測定= A測定-A對照=0.490-0.105=0.385，ΔA空白=A1空白-A2空白=0.983-0.005=0.978，抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=60.634%，按樣本質(zhì)量計算酶活得：

SOD活性（U/g 質(zhì)量）=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =501.338 U/g 質(zhì)量。

3、 450×10⁴個Hela細胞，加入1mL提取液進行勻漿研磨，取上清按照測定步驟操作，用1mL玻璃比色皿測得計算ΔA測定= A測定-A對照=0.523-0.027=0.496，ΔA空白=A1空白-A2空白=0.983-0.005=0.978，抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=49.284%，按細胞數(shù)量計算酶活得：

SOD活性（U/10⁴ cell）=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷N×F =0.024 U/10⁴ cell。

4、 取225μL兔血清（相應減少蒸餾水用量）按照測定步驟操作，用1mL玻璃比色皿測得計算ΔA測定= A測定-A對照=0.855-0.158=0.697，ΔA空白=A1空白-A2空白=0.983-0.005=0.978，抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=28.732%，按血清（漿）體積計算酶活得：

血清（漿）SOD活性（U/mL）=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總]÷V樣×F=1.792 U/mL。

參考文獻：

[1] Peskin A V, Winterbourn C C. A microtiter plate assay for superoxide dismutase using a water-soluble tetrazolium salt (WST-1) [J]. Clinica chimica acta, 2000, 293(1-2):157-166.

[2] Hou Z, Zhao L, Wang Y, et al. Purification and characterization of superoxide dismutases from sea buckthorn and chestnut rose[J]. Journal of food science, 2019, 84(4): 746-753.

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